DNeasy Blood and Tissue Kits for DNA Isolation

Zur Extraktion von Gesamt-DNA aus tierischem Blut, Gewebe und Zellen sowie aus Hefen, Bakterien oder Viren im Spin-Säulen- oder 96-Well-Format.

Ist Ihnen Nachhaltigkeit wichtig?
Wenn Sie eine umweltfreundlichere Alternative zu dem ausgewählten Produkt suchen, sind Sie hier genau richtig.

DNeasy Blood & Tissue Kit (50) icon_0368_ls_gen_eco_friendly-s

Kat.-Nr. / ID.   69504

50 DNeasy Mini Spin Columns, Proteinase K, Puffer, Collection Tubes (2 ml)
264,00 €
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KitENNew
DNeasy Blood & Tissue Kit
DNeasy Blood & Tissue QIAcube Kit
Eco-friendlier kit
SäulentypPlattentyp
Mini
96-well
Präparationen
50
250
DNeasy Blood & Tissue Kits sind für molekularbiologische Anwendungen vorgesehen. Diese Produkte sind nicht zur Diagnose, Prävention oder Behandlung einer Erkrankung vorgesehen.
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Eigenschaften

  • Standardisierte Methode für eine Vielzahl von Probentypen
  • Hohe Ausbeute selbst bei spezialisierten Proben
  • Qualitativ hochwertige DNA
  • Optimierte Protokolle für eine große Bandbreite an Ausgangsmaterialien
  • Spin-Säulen- und 96-Well-Hochdurchsatzformate
  • Automatisieren Sie Arbeitsabläufe auf dem QIAcube Connect

Angaben zum Produkt

DNeasy Blood & Tissue Kits extrahieren DNA schnell mit einem auf Silika basierenden, phenol- und chloroformfreien Verfahren im Spin-Säulen- und 96-Well-Platten-Format. Bei den meisten Proben macht die direkte Lyse mit Proteinase K einen mechanischen Aufschluss überflüssig, wodurch sich der manuelle Zeitaufwand verringert. Maßgeschneiderte Protokolle für spezifische Proben gewährleisten eine konsistente Extraktion qualitativ hochwertiger DNA, die sich perfekt für die biowissenschaftliche, Genotypisierungs- und veterinärmedizinische Pathogenforschung eignet. Die Kits können auf dem QIAcube Connect automatisiert werden.

Eine nachhaltigere Alternative bietet das QIAwave DNA Blood & Tissue Kit, das den Verbrauch von Plastik und Pappkarton um bis zu 62 % bzw. 58 % reduziert. Das Kit enthält Abfallröhrchen aus 100 % recyceltem Kunststoff, die während des gesamten Verfahrens wiederverwendet werden können. QIAwave-Puffer liegen als Konzentrat vor, wodurch der Kunststoffverbrauch pro Flasche um bis zu 90 % gesenkt wird. Trotz der optischen Unterschiede ist das QIAwave Kit genauso benutzerfreundlich wie das Standardkit, mit identischer Chemie und Leistung. Hinweis: Für die Rekonstitution der Puffer werden sterile Glasflaschen benötigt.

In Zusammenarbeit mit My Green Lab haben wir die Umweltauswirkungen des DNeasy Blood & Tissue Kit (50/250) und des QIAwave DNA Blood & Tissue Kit (50/250) bewertet. My Green Lab ACT-Umweltverträglichkeitslabels dienen der Bewertung und Einstufung von Produkten auf der Grundlage verschiedener Nachhaltigkeitskriterien, darunter:

  • Herstellung
  • Verantwortungsvolles Chemikalienmanagement
  • Nachhaltige Produkt- und Verpackungsmaterialien
  • Entsorgung der Verpackung am Ende des Lebenszyklus

Die Produkte werden von 1–10 bewertet, mit Ausnahme des Energie- und Wasserverbrauchs, der mit 1 Punkt/kWh bzw. Gallone (3,785 Liter) bewertet wird. Eine niedrige Punktzahl bedeutet eine geringere Umweltbelastung – siehe Abbildungen „DNeasy Blood & Tissue Kit und QIAwave DNA Blood & Tissue Kit ACT-Umweltverträglichkeitslabels USA ( 50/  250), EU ( 50/  250) und Vereinigtes Königreich ( 50/  250)“. 

 

Leistung

Das effiziente Verfahren der DNeasy und QIAwave DNA Blood & Tissue Kits ermöglicht eine hohe Ausbeute an Gesamt-DNA aus tierischen Blut- und Gewebeproben (siehe Tabelle Typische DNA-Ausbeute aus tierischen Geweben und Abbildung  DNA-Ausbeuten). Optimierte Protokolle gewährleisten hohe Ausbeuten bei nicht standardmäßigen Proben wie Tierhaaren (siehe  Genotypisierung von Pferden) sowie bei Zellkulturen, fixierten Geweben oder grampositiven und -negativen Bakterien. Für die DNA-Aufreinigung aus Hefen, Insekten, Haaren und anderen Probentypen sind spezielle Online-Protokolle verfügbar.

Da die Chemie des QIAwave DNA Blood & Tissue Kit und des DNeasy Blood & Tissue Kits identisch ist, weisen sie die gleiche Leistung auf. Beide Kits zeigten eine überragende Leistung im Vergleich zu Konkurrenzprodukten (siehe Abbildung „Leistung des QIAwave DNA Blood & Tissue Kit“).

Bei Einhaltung des QIAwave DNA Blood & Tissue Kit-Standardprotokolls können hohe Ausbeuten an Gesamt-DNA aus tierischen Blut- und Gewebeproben isoliert werden (siehe Tabelle – „Typische DNA-Ausbeute aus tierischem Gewebe mit QIAwave DNA Blood & Tissue“ und Abbildung „ DNA-Ausbeuten“). Darüber hinaus wurden die Protokolle optimiert, um hohe Ausbeuten bei nicht standardmäßigen Proben zu gewährleisten, einschließlich:

  • Tierhaare
  • Zellkulturen
  • Gram-positive und -negative Bakterien
  • Hefe
  • Insekten
  • Andere Probenarten

 

Typische Ausbeute aus tierischen Geweben mit DNeasy und QIAwave Kits
Quelle Menge DNA (µg)
Säugetierblut 100 µl 3–6
Vogelblut 5 µl 9–40
HeLa-Zellen 2 x 106 15–25
Leber 25 mg 10–30
Gehirn 25 mg 15–30
Niere 25 mg 15–30
Milz 10 mg 5–30
Mausschwanz 1,2 cm (Spitze) 10–25
Rattenschwanz 0,6 cm (Spitze) 20–40
Schweineohr 25 mg 10–30
Pferdehaar 10 Haare 2–4
Fischflosse 20 mg 10–20
Fischlaich (Makrele) 10 mg 5–10

DNeasy Blood & Tissue Kits vereinfachen die Aufreinigung von DNA aus einem breiten Spektrum von Probentypen, einschließlich Tierarten, die häufig in biowissenschaftlichen, veterinärmedizinischen und Genotypisierungsanwendungen vorkommen (siehe  Qualitativ hochwertige DNA). Die aufgereinigte DNA ist frei von PCR-Inhibitoren und ermöglicht einen sensitiven Nachweis in Standard-, Multiplex- (siehe  Effiziente 16-plex-PCR) und Real-time PCR (siehe  Real-time PCR). DNeasy Blood & Tissue Kits liefern zuverlässige Ergebnisse – von der Laboranalyse transgener Mäuse (siehe Hochdurchsatzaufreinigung) bis hin zu Viehzuchtprogrammen (siehe  Genotypisierung von Schweinen) und Stammbaum-Genotypisierung. Routinetest-Anwendungen lassen sich mit dem DNeasy 96 Blood & Tissue Kit leicht hochskalieren (siehe Hochdurchsatzaufreinigung).

 

Prinzip

DNeasy und QIAwave DNA Blood & Tissue Kits sind für die schnelle Aufreinigung von Gesamt-DNA (z. B. genomische, mitochondriale und pathogene DNA) aus einer Vielzahl von Probenquellen, einschließlich frischem oder gefrorenem tierischem Gewebe und Zellen, Blut oder Bakterien, konzipiert.

Die DNeasy-Membran kombiniert die Bindungseigenschaften einer silikabasierten Membran mit einfacher Mikrospin-Technologie oder mit dem QIAGEN 96-Well-Plate Centrifugation System. DNA adsorbiert an der DNeasy-Membran in Gegenwart hoher Konzentrationen chaotroper Salze, die hydratisierten Molekülen in Lösung Wasser entziehen. Die Pufferbedingungen in den DNeasy Blood & Tissue-Verfahren sind so konzipiert, dass eine spezifische Adsorption der DNA an die Silikamembran und eine optimale Entfernung von Verunreinigungen und Enzyminhibitoren möglich ist.

Für die Aufreinigung ist keine Phenol- oder Chloroformextraktion oder Alkoholausfällung erforderlich und der manuelle Aufwand ist minimal. Dadurch eignen sich DNeasy Blood & Tissue Kits hervorragend für die gleichzeitige Verarbeitung mehrerer Proben. Für Anwendungen mit höherem Durchsatz ermöglicht das DNeasy 96 Blood & Tissue Kit die gleichzeitige Verarbeitung von 96 oder 192 Proben.

 

Verfahren

Die zuverlässige Silika-Membrantechnologie in praktischen Spin-Säulen- oder 96-Well-Formaten gewährleistet eine schnelle und reproduzierbare DNA-Aufreinigung und macht eine organische Extraktion und Alkoholausfällung überflüssig (siehe  DNeasy Mini- und -96-Verfahren). Die Proben werden zunächst mit Proteinase K lysiert. Die Pufferbedingungen werden so eingestellt, dass sie optimale DNA-Bindungsbedingungen bieten, und das Lysat wird auf die DNeasy Mini-Spin-Säule oder die DNeasy-96-Platte geladen. Während der Zentrifugation wird die DNA selektiv an die DNeasy-Membran gebunden, während Verunreinigungen durchlaufen. Verbleibende Verunreinigungen und Enzyminhibitoren werden in zwei effizienten Waschschritten entfernt. Die DNA wird anschließend in Wasser oder Puffer eluiert und ist gebrauchsfertig.

Die DNeasy Mini-Spin-Säulen im DNeasy Blood & Tissue Kit sind in Entnahmeröhrchen vorverpackt und einzeln versiegelt, um Bequemlichkeit und Sicherheit zu gewährleisten. Das Aufreinigungsverfahren mit DNeasy Mini-Spin-Säulen kann auf dem QIAcube Connect automatisiert werden. Das DNeasy 96 Blood & Tissue Kit ermöglicht eine Hochdurchsatzverarbeitung in einem 96-Well-Format unter Verwendung des QIAGEN 96-Well-Plate Centrifugation System.

Standardprotokolle für DNeasy Blood & Tissue Kits können nahtlos über das TRACKMAN Connected-System ausgeführt werden.

Anwendungen

DNeasy Blood & Tissue Kits und QIAwave DNA Blood & Tissue Kits liefern qualitativ hochwertige DNA, die in allen nachgelagerten Assays, einschließlich dPCR- und NGS-Anwendungen, verwendet werden kann, und zwar in folgenden Bereichen:

  • Biowissenschaftliche Forschung
  • Viehzucht
  • Stammbaum-Genotypisierung
  • Erforschung von Pathogenen in der Veterinärmedizin
  • Routinetests

 

Ergänzende Daten und Abbildungen

Spezifikationen

EigenschaftenSpezifikationen
ApplicationsPCR, Real-time PCR, Genotypisierung
Elution volume100–200 µl
Time per run or per prep20 Minuten – 1 Stunde
Main sample typeBlut, Gewebe
Format96-Well-Platte, Spin-Säule
Sample amount100 µl/25 mg
ProcessingManuell
Yield6 µg/30 µg
TechnologySilika-Technologie
Purification of total RNA, miRNA, poly A+ mRNA, DNA or proteinDNA

Ressourcen

Supplementary Protocols (4)
This protocol is designed for purification of DNA from up to 5 x 107 yeast cells.
This protocol is designed for purification of DNA from a 200 μl crude lysate.
This protocol is designed for purification of DNA from up to 50 mg of insects, such as drosophila.
Kit Handbooks (2)
For purification of total DNA from animal blood, animal tissue, rodent tails, ear punches, cultured cells, fixed tissue, bacteria, insects
Certificates of Analysis (1)

Publikationen

The unique 16S rRNA genes of piezophiles reflect both phylogeny and adaptation.
Lauro FM; Chastain RA; Blankenship LE; Yayanos AA; Bartlett DH;
Appl Environ Microbiol; 2006; 73 (3):838-45 2006 Dec 8 PMID:17158629
Assays to detect beta-tubulin codon 200 polymorphism in Trichuris trichiura and Ascaris lumbricoides.
Diawara A; Drake LJ; Suswillo RR; Kihara J; Bundy DA; Scott ME; Halpenny C; Stothard JR; Prichard RK;
PLoS Negl Trop Dis; 2009; 3 (3):e397 2009 Mar 24 PMID:19308251
Whole genome amplification for array comparative genomic hybridization using DNA extracted from formalin-fixed, paraffin-embedded histological sections.
Huang J; Pang J; Watanabe T; Ng HK; Ohgaki H;
J Mol Diagn; 2009; 11 (2):109-16 2009 Feb 5 PMID:19197000
Real-time PCR detection of pathogenic microorganisms in roof-harvested rainwater in Southeast Queensland, Australia.
Ahmed W; Huygens F; Goonetilleke A; Gardner T;
Appl Environ Microbiol; 2008; 74 (17):5490-6 2008 Jul 11 PMID:18621865
MicroRNA-137 targets microphthalmia-associated transcription factor in melanoma cell lines.
Bemis LT; Chen R; Amato CM; Classen EH; Robinson SE; Coffey DG; Erickson PF; Shellman YG; Robinson WA;
Cancer Res; 2008; 68 (5):1362-8 2008 Mar 1 PMID:18316599

FAQ

How do I safely inactivate biohazardous flow-through material?

Always dispose of potentially biohazardous solutions according to your institution’s waste-disposal guidelines. Although the lysis and binding buffers in QIAamp, DNeasy, and RNeasy kits contain chaotropic agents that can inactivate some biohazardous material, local regulations dictate the proper way to dispose of biohazards. DO NOT add bleach or acidic solutions directly to the sample-preparation waste. Guanidine hydrochloride in the sample-preparation waste can form highly reactive compounds when combined with bleach.
Please access our Material Safety Data Sheets (MSDS) online for detailed information on the reagents for each respective kit.

FAQ-12
Do you have a protocol for purification of total DNA from yeast?

Yes, please follow the Supplementary Protocol 'Purification of total DNA from yeast using the DNeasy Blood & Tissue Kit' (DY13).

 

FAQ-1253
Do you have a protocol for purification of total DNA from insects?

Yes, please follow the Supplementary Protocol 'Purification of total DNA from insects using the DNeasy Blood & Tissue Kit' (DY14).

 

FAQ-1254
Do you have a protocol for purification of total DNA from crude lysates?

Yes, please follow the Supplementary Protocol 'Purification of total DNA from crude lysates using the DNeasy Blood & Tissue Kit' (DY15).

 

FAQ-1255
Do you have data showing effects of sample size on DNA yield and purity using the DNeasy 96 Blood & Tissue kit?
What dedicated QIAcube Kits are available?
How can I precipitate genomic DNA using isopropanol?

Alcohol precipitation is commonly used for concentrating, desalting, and recovering nucleic acids. Since less alcohol is required for isopropanol precipitation, this is the preferred method for precipitation of DNA from large volumes. In addition, isopropanol precipitation can be performed at room temperature, which minimizes co-precipitation of salt that interferes with downstream applications.

 

Procedure

  1. Adjust the salt concentration, for example, with sodium acetate (0.3 M, pH 5.2, final concentration) or ammonium acetate (2.0–2.5 M, final concentration).
  2. Add 0.6–0.7 volumes of room-temperature isopropanol to the DNA solution and mix well.
  3. Centrifuge the sample immediately at 10,000–15,000 x g for 15–30 min at 4°C
  4. Carefully decant the supernatant without disturbing the pellet.
  5. Wash the DNA pellet by adding 1–10 ml (depending on the size of the preparation) of room-temperature 70% ethanol. This removes co-precipitated salt and replaces the isopropanol with the more volatile ethanol, making the DNA easier to redissolve.
  6. Centrifuge at 10,000–15,000 x g for 5–15 min at 4°C.
  7. Carefully decant the supernatant without disturbing the pellet.
  8. Air-dry the pellet for 5–20 min (depending on the size of the pellet).
  9. Redissolve the DNA in a suitable buffer.

Tip: Use a buffer with a pH of 7.5–8.0, as DNA does not dissolve easily in acidic buffers. Often distilled water can have an acidic pH. The addition of EDTA protects the DNA from DNase digestion.

Tip: High-molecular-weight DNA, such as genomic DNA, should be redissolved very gently to avoid shearing. If the DNA pellet does not dissolve easily, heat at 55°C for 1–2 h with gentle shaking.

FAQ-2953
303 - Can I use my own lysis buffer with the DNeasy Blood & Tissue or QIAamp DNA Mini Kit?

If you have optimized the lysis conditions for a specific sample type, you can lyse the sample in your lysis buffer, and follow the Supplementary Protocol 'Purification of total DNA from crude lysates using the DNeasy Blood & Tissue Kit' (DY15), or the corresponding protocol in the Appendix of the QIAamp DNA Mini Kit and QIAamp DNA Blood Mini Kit Handbook.

 

FAQ-303
3192 - Is QIAGEN Protease compatible with Buffer ATL?
No, QIAGEN Protease is not compatible with Buffer ATL.
FAQ-3192
Is it possible to stop the DNeasy tissue protocol and store the tissue lysates after digesting in buffer ATL and Proteinase K?
After proteinase K digestion, tissue samples can be stored in Buffer ATL for up 6 months at ambient temperature without any reduction in DNA quality.
FAQ-3362
What is the shelf-life for QIAGEN Proteinase K (cat. no. 19131, 19133)?

QIAGEN Proteinase K is stable for up to 1 year after delivery when stored at room temperature. To prolong the shelf-life of Proteinase K, storage at 2–8°C is recommended.

FAQ-3447
Is the quality and size of DNA extracted with the DNeasy Blood & Tissue kit good enough to generate DNA-libraries for next generation sequencing?
The size of DNA obtained with DNeasy Blood & Tissue kit ranges between 100 bp and 50 kb, with 30 kb fragments predominating. The 30 kb fragments are a good starting point for most of the library preparations. Furthermore, the purified DNA is free of protein, nucleases, and other contaminants and inhibitors, and therefore is suitable for NGS.
FAQ-3517
Are there important considerations for plasma generation and urine handling?

It is strongly advised to follow the recommendations for preparing sample material provided in the corresponding Protocol Sheet to ensure reliable results.

Plasma: It is recommended to perform plasma separation immediately after blood collection when using EDTA as anticoagulant to prevent the release of genomic DNA into the plasma fraction.

Urine: Because circulating cell-free DNA in non-stabilized urine samples is rapidly degraded after sample collection due to high nuclease activity, eluates may contain no DNA or exhibit low DNA concentration. Therefore, it is recommended to stabilize urine samples. Even when using stabilized urine, it is recommended to perform a centrifugation step immediately after stabilization to prevent the release of genomic DNA from cells. Alternatively, non-stabilized urine samples can be processed immediately after collection and centrifugation using ATL pretreatment and automated DNA extraction as described in the corresponding Protocol Sheet.

FAQ-3699
What QIAGEN kit can I use to isolate DNA from food products to test for genetically modified organisms (GMOs)?

For plant-based foods, such as soy, tofu, and cookies, DNA isolation has been successfully carried out using the DNeasy Plant Mini Kit. The QIAamp DNA Stool Mini Kit has been used for isolation of genomic DNA from highly processed foods, and foods that contain high levels of PCR inhibitors, such as chocolate. For meat and processed meats, such as sausage, we suggest the DNeasy Blood & Tissue Kit.

See also the QIAGEN News article "Detection of genetically modified soybean and maize in raw and processed foodstuffs", and the accompanying editorial "Detecting genetically modified organisms in food."

FAQ-371
How can I improve DNA yields from very tough tissues using the DNeasy Blood & Tissue Kit or the QIAamp DNA Mini Kit?

Efficient DNA isolation requires thorough sample disruption and digestion.

Although the QIAamp and DNeasy procedures requires no mechanical disruption of the tissue sample, the lysis time will be reduced if the sample is ground in liquid nitrogen or mechanically homogenized in advance. For mechanical homogenization, a rotor–stator homogenizer, such as the QIAGEN TissueRuptor, or a bead mill, such as the QIAGEN TissueLyser, can be used.

To improve digestion of tough tissue samples, Proteinase K incubation at 56°C can be performed overnight. DNA yields may be improved by increasing the amount of Proteinase K or by adding additional proteinase K after several hours of digestion.  

FAQ-374
What water should I use to prepare the buffer concentrates?
We recommend using highly pure water for reconstitution. Ultrapure water (such as the one from MilliQ system, also known as type 1 water) with a resistivity of 18.2 MΩ-cm at 25°C can be used. In case you do not have access to type 1 water, QIAGEN offers Nuclease-Free Water (5 L, cat. No. 129117); and Nuclease-Free Water (1000 mL, cat. No. 129115). It is important that you do not use tap water as this may interfere with the extraction of the target analyte. 
FAQ-3986
What is the new Waste Tube made of?
The new Waste Tube is made from recycled plastic recovered from post-consumer plastic waste. Due to the slight composition differences of the raw material, the color of the tubes may differ from lot to lot. However, this has no effect on its intended use of collecting flow-through from sample binding and membrane washing. After each step, the flow-through is discarded, and the Waste Tube can be reused. The Waste Tube is only used to process waste and should never come into direct contact with the analyte of interest. For detailed instructions, you can watch our instructional video at www.qiagen.com/qiawavewastetube
FAQ-3987
Does the reuse of the Waste Tubes increase the risk of cross-contamination?
No, we were able to prove experimentally that cross-contamination does not occur through the reuse of the Waste Tubes. The Waste Tubes are used to collect the flow-through from the lysis and washing steps, where the flow-through is discarded afterwards. If the flow-through is to be used for further processing, we recommend the use of a Collection Tube
FAQ-3988
I don’t have any glassware in the lab, is the QIAwave kit still a good option for me?
The concept of QIAwave includes the reconstitution of functional buffers. We recommend the use of glass bottles for this procedure. Glass bottles are easier to clean, sterilize and reuse than plastic bottles, further reducing the plastic footprint of the kit. If you do not have the option of using clean glass or plastic bottles, we recommend using our legacy kits. 
FAQ-3989
Are the QIAwave kits based on a different chemistry than the legacy kits?
No, the chemistry between the QIAwave kits and the legacy kits is the same, and so is the performance. The QIAwave buffers come as concentrates, reducing the amount of plastic per bottle while maintaining the same functionality after reconstitution. The advantage of the QIAwave kits is the reduction of materials used for the kits, such as plastics, cardboard and paper. In addition, the QIAwave kits contain Waste Tubes made from 100% post-consumer plastic. 
FAQ-3990
Is there a way to compare the environmental impacts of the kit?
In partnership with My Green Lab, we were able to assess the environmental impact of the kits. My Green Lab ACT (accountability, consistency and transparency) environmental impact factor labels are designed to evaluate and score products on several sustainability criteria. The products are scored from 1 to 10, except for energy and water consumption which are scored as 1 point per kWh or gallon, respectively. A low score means a lower environmental factor.  
FAQ-3991
Can the QIAwave kits be recycled?
We provided an infographic describing the composition of most of our purification kits. You can use the information provided as a guide to recycle kit components and use it to reduce plastic waste in your laboratory. Depending on the specific kit and application, certain kit components may contain or come into contact with chemicals and biological samples, in this case, the components should be disposed of according to local guidelines and regulations. You can find more information on More Sustainable Products (qiagen.com).
FAQ-3992
What is the expected yield of genomic DNA isolated from bacteria with the DNeasy Blood & Tissue or QIAamp DNA Mini Kit?

The expected yield of genomic DNA isolated from bacteria with the DNeasy Blood & Tissue Kit or the QIAamp DNA Mini Kit is approximately 10 ug of DNA per 2x 109 bacterial cells. Note that yields of genomic DNA will vary depending on bacterial strain, quality of the starting material, growing conditions, and the amount of material processed.

 

FAQ-632
What can be used as an alternative to the A260 measurement for quantification of small amounts of RNA and DNA?

Small amounts of RNA and DNA may be difficult to measure spectrophotometrically. Fluorometric measurements, or quantitative RT-PCR and PCR are more sensitive and accurate methods to quantify low amounts of RNA or DNA.

Fluorometric measurements are carried out using nucleic acid binding dyes, such as RiboGreen® RNA Quantitation Reagent for RNA, and PicoGreen® DNA Quantitation Reagent for DNA (Molecular Probes, Inc.).

FAQ-728
What is the composition of buffer AE?

The composition of Buffer AE is:

  • 10 mM Tris-Cl
  • 0.5 mM EDTA; pH 9.0.
FAQ-730
Do you have a protocol for isolation of genomic DNA from insects?

Yes, we have the following protocols:

  • Isolation of genomic DNA from mosquitoes or other insects using the QIAGEN Genomic tip (QG06).
  • Purification of total DNA from insects using the DNeasy Blood & Tissue Kit (DY14).
FAQ-904
Do you have a protocol for the isolation of genomic DNA from bone?

Yes, we have the following protocols:

  • Isolation of genomic DNA from compact bone using the QIAamp DNA Mini Kit (QA02)
  • Isolation of genomic DNA from compact bone using the DNeasy Blood & Tissue Kit (DY01)
  • Purification of genomic DNA from bones using the QIAamp DNA Micro Kit (QA39)
  • Purification of archive-quality DNA from bone fragments using the Gentra Puregene Tissue Kit (PG38).
FAQ-908
Do you have a protocol for the isolation of genomic DNA from sperm?

Yes, we have the following protocols:

  • Isolation of genomic DNA from sperm using the QIAamp DNA Mini Kit; protocol 1 (QA03), long procedure
  • Isolation of genomic DNA from sperm using the QIAamp DNA Mini Kit; protocol 2 (QA04), short procedure
  • Purification of total DNA from animal sperm using the DNeasy Blood and Tissue kit; protocol 1 (DY02), long procedure
  • Purification of total DNA from animal sperm using the DNeasy Blood and Tissue kit; protocol 2 (DY03), short procedure
  • Purification of DNA from epithelial cells mixed with sperm cells using the QIAamp DNA Micro Kit (QA40).
FAQ-909
Do you have a protocol for Acetyl Cysteine (NALC) treatment of viscous samples?

Yes, please follow either of the User-Developed Protocols:

FAQ-913
Do you have a protocol for isolation of genomic DNA from saliva and mouthwash?

Yes, we have the following protocols:

  • Isolation of genomic DNA from saliva and mouthwash using the QIAamp DNA Mini Kit; vacuum procedure (QA19v)
  • Isolation of genomic DNA from saliva and mouthwash using the QIAamp DNA Mini Kit; spin procedure (QA19s)
  • Isolation of genomic DNA from saliva using the DNeasy Blood & Tissue Kit; spin procedure (DY07)
FAQ-917
Do you have a protocol for the isolation of DNA from soft tissues using the TissueLyser?
Do you have a protocol for the isolation of viral DNA from stool?
Yes, please follow the User-Developed Protocol 'Isolation of viral DNA from stool using the DNeasy Blood & Tissue Kit' (DY05).
FAQ-929
Do you have a protocol for isolation of genomic DNA from saliva using the DNeasy Blood & Tissue Kit?

Yes, please follow the User-Developed Protocol 'Isolation of genomic DNA from saliva using the DNeasy Blood & Tissue Kit; spin procedure' (DY07).

 

FAQ-931
Do you have a protocol for purification of DNA from cultured animal cells using the DNeasy 96 Blood & Tissue Kit?

Yes, please follow the Supplementary Protocol 'Purification of DNA from cultured animal cells using the DNeasy 96 Blood & Tissue Kit' (DY12).

 

FAQ-934