Enzymes, NGS, Two female scientists both Caucasian discussing results one holing a test-tube with blue liquid in a laboratory setting
분자 생물학용 효소

클로닝 및 DNA 재조합

클로닝 및 DNA 재조합 기술은 건강과 질병에 있어서 유전자 및 세포의 작용에 대한 많은 통찰력을 제공했습니다. 이제 클로닝 기술과 응용 기술은 조합 라이브러리의 높은 처리량 어셈블리 및 후성유전학적 변형 매핑과 같은 혁신적인 응용 기술을 통해 더욱 발전했습니다.

적합한 플라스미드 벡터로 템플릿 DNA를 복제하기 전에 말단 변형이 필요할 수 있습니다. 클로닝을 위해 확인된 DNA는 일반적으로 제한 효소 분해 또는 PCR 증폭을 통해 공급원에서 얻게 됩니다. Klenow Fragment, T4 DNA 중합 효소, T4 폴리뉴클레오티드 키나아제와 같은 특수 효소는 DNA 단편과 벡터 사이의 공유 결합을 개선하기 위해 3’ 또는 5’ 말단을 변형합니다.

다음 클로닝 단계는 벡터와 인서트의 말단을 어닐링하는 데 적합한 효소를 사용한 라이게이션입니다.

테일링은 일반적으로 TA 클로닝에 사용할 T-벡터를 준비하거나 TA 클로닝에 사용할 고성능(high-fidelity) 중합효소(Taq 아님)에 의해 생성된 PCR 제품을 A-테일링하기 위해 수행됩니다. Taq DNA 중합효소로 증폭한 산물은 이미 A-테일링 되어 있습니다.

효소 말단 변형

말단 fill 5’→3’ 말단 fill 3’→5’  클로닝을 위한 A-테일링 말단 5’ 인산화

P7060L Klenow Fragment
출시 예정

✔ 예 ✔ 예 ✘ 아니요 ✘ 아니요

P7080L T4 DNA Polymerase*

✔ 예 ✔ 예 ✘ 아니요 ✘ 아니요

P7010 Klenow(3’→5’ exo-)

✘ 아니요 ✘ 아니요 ✔ 예 ✘ 아니요

Y9040L T4 Polynucleotide Kinase

✘ 아니요 ✘ 아니요 ✘ 아니요 ✔ 예

Y9140† End Repair Mix

✔ 예 ✔ 예 ✘ 아니요 ✔ 예
null

DNA 연결효소는 다음과 같이 작용합니다.

  • 공여체(donor) 말단의 아데닐화를 위한 5' 일인산염
  • 수용체(acceptor) 말단의 3' 수산기
null

DNA 연결효소는 다음을 결합합니다.

  • 평활(blunt) 말단과 평활 말단
  • 점착(sticky) 말단과 다른 점착 말단
효소 라이게이션

점착 말단 라이게이션 평활 말단 라이게이션 닉 (nick) 밀봉

L6090L E. coli DNA Ligase
출시 예정

✔ 예 ✘ 아니요 ✔ 예

L6010L T3 DNA Ligase
출시 예정

✔ 예 A/T > G/C [1.0 M NaCl] ✔ 예 ✔ 예

L6030 T4 DNA Ligase
출시 예정

✔ 예 ✔ 예 ✔ 예
EN11 T4 DNA Ligase
BLIRT
✔ 예 ✔ 예 ✔ 예

L6020L T7 DNA Ligase
출시 예정

✔ 예 ✘ 아니요 ✔ 예
EN13 Tth DNA Ligase* ✔ 예 ✘ 아니요 ✔ 예

L6060L Taq DNA Ligase
출시 예정

✘ 아니요 ✘ 아니요 ✔ 예

염기서열 및 라이게이션 독립 클로닝(Sequence and Ligation Independent Cloning, SLIC)은 엑소뉴클레아제 효소 활성을 이용합니다.

증폭
증폭

염기서열 및 라이게이션 독립 클로닝의 첫 번째 단계를 위해 상보적인 5'-꼬리를 포함하는 프라이머로 인서트 및 벡터를 증폭합니다.

처리
처리

벡터를 처리하고 T4 DNA 중합효소로 PCR 제품을 간단히 삽입합니다. 3'→5 엑소뉴클레아제 활성으로 오목한 말단(recessed end)의 비율이 더 높아집니다.

혼합
혼합

제품을 혼합합니다. 오버행(제한 효소의 짧은 “점착 말단”과 유사)은 어닐링되어 E. coli로 변형된 후 체내에서 결합됩니다.

차세대 염기서열 분석을 위한 라이브러리는 단편화된 DNA로 시작됩니다. 효소 작용으로 클로닝 단계가 완료됩니다.

DNA 라이브러리 구축에 필요한 모든 효소 구성 요소는 어댑터를 사용하여 '자가 제작(home-brew)' 라이브러리 준비 키트로 조합할 수 있습니다.

유전자 합성은 상보적으로 겹치는 긴 영역을 가진 올리고데옥시뉴클레오티드를 결합하는 것을 기반으로 합니다.

T4 Polynucleotide Kinase
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End-Repair Mix
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E. coli DNA Ligase
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T3 DNA Ligase
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T7 DNA Ligase
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Klenow Fragment는 무엇이며 응용 기술에는 어떤 것이 있나요?

E. coli DNA 중합효소 I의 5'→3' 엑소뉴클레아제 활성은 다수의 응용 기술에 적합하지 않습니다. Klenow Fragment는 5'→3' 중합효소와 3'→5' 프루프리딩 엑소뉴클레아제를 포함하는 큰 도메인입니다. Klenow Fragment는 이러한 활성이 부족하며, 단일 가닥 템플릿에서 이중 가닥 DNA 합성, 5' 오버행 평활화를 위해 DNA 단편의 오목한 3' 말단 필링(filling), 돌출된 3' 오버행 분해, 라벨링된 DNA 프로브 준비 등 유용한 연구 응용 기술에 사용됩니다. 

E. coli DNA 중합효소 I의 5'→3' 엑소뉴클레아제 활성이 바람직하지 않을 수 있는 것처럼, Klenow Fragment의 3'→5' 엑소뉴클레아제 활성도 특정 응용 기술에서 바람직하지 않을 수 있습니다. 이 문제는 5'→3' 중합효소 활성은 유지하지만 엑소뉴클레아제 활성이 없는 Klenow Fragment(3'→5' exo-) 효소를 생성하는 돌연변이를 도입함으로써 극복할 수 있습니다. Klenow Fragment(3'→5' exo-)는 마이크로어레이의 일부 형광 라벨링 반응과 차세대 염기서열 분석을 위한 DNA 라이브러리 준비에 자주 사용되는 DNA 어댑터를 DNA 단편에 결합하는 과정의 중요한 단계인 dA 및 dT 테일링에 사용됩니다

분자 생물학에서 T4 DNA polymerase는 어떤 기능을 하나요?

T4 페이지의 DNA 중합효소는 E. coli DNA 중합효소 I, Taq DNA 중합효소, 미토콘드리아 DNA 중합효소를 포함하는 중합효소 패밀리 A의 일부입니다. T4 DNA 중합효소는 라벨링 된 5’-오버행 또는 라벨링되지 않은 dNTP 또는 3'-오버행이 있는 DNA 분자에서 평활(blunt) 말단을 생성하는 데 효과적으로 사용할 수 있습니다. T4 DNA 중합효소는 템플릿 의존적이며 프라이머가 필요하고 5’→3’ 엑소뉴클레아제 기능이 없습니다. T4 DNA 중합효소는 라이게이션과 무관하게 PCR 제품의 복제에 사용할 수 있습니다. 

라이게이션 독립 클로닝(Ligation Independent Cloning, LIC)은 제한 효소/리가아제 클로닝의 대체 기술입니다. 인서트는 PCR로 증폭되고 벡터는 제한 효소 분해 또는 PCR로 선형화됩니다. LIC는 T4 DNA 중합효소의 3’→5’ 엑소뉴클레아제 활성을 사용하여 벡터와 인서트 사이에 상보성을 가진 오버행을 생성합니다. 원스텝 염기서열 및 라이게이션 독립 클로닝(Sequence and Ligation Independent Cloning. SLIC)에서는 선형화된 벡터와 PCR 증폭 인서트를 단일 튜브에 혼합하고 T4 DNA 중합효소로 처리합니다. 혼합물을 얼음 위에서 인큐베이션하여 반응을 멈추고, 컴피턴트(competent) E. coli 세포에 혼합물을 투입한 후 갭과 오버행을 복구합니다.

T4 DNA 리가아제가 가장 많이 사용되는 이유는 무엇인가요?

T4 DNA 리가아제는 실험실 연구에서 가장 일반적으로 사용되는 다용도 리가아제로, 이 효소는 DNA와 올리고뉴클레오타이드의 응집성 또는 평활(blunt) 말단을 모두 라이게이션할 수 있기 때문입니다. T4 DNA 리가아제는 이중 DNA의 단일 가닥 닉(nick)을 복구할 수 있지만 단일 가닥 핵산을 라이게이션하지는 못합니다. T4 DNA 리가아제는 RNA 분자가 RNA:DNA 혼성에 있을 때 결합합니다. 점착성 DNA 말단을 12–16°C에서 T4 DNA 리가아제로 라이게이션하면 효소 활성과 어닐링된 DNA 오버행의 안정성 사이에 균형을 유지할 수 있습니다. T4 DNA 리가아제는 65°C에서 10분간 인큐베이션하여 열 불활성화할 수 있습니다.

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